Resistencia a macrólidos en Staphylococcus de pacientes con COVID-19 en Santander
DOI:
https://doi.org/10.15649/cuidarte.4924Palabras clave:
Coinfección, COVID-19, Staphylococcus, Macrólidos, Resistencia a AntibióticosResumen
Highlights
- Alta prevalencia de Staphylococcus aureus y Staphylococcus epidermidis resistentes a macrólidos en pacientes hospitalizados con COVID-19 en Santander, Colombia.
- Identificación predominante de genes de resistencia ermB y ermT, subrayando su importancia en la resistencia a macrólidos en cocos Grampositivos.
- S. epidermidis, típicamente no asociado a infecciones respiratorias, fue detectado en coinfecciones, sugiriendo un rol oportunista en entornos hospitalarios.
- Resultados respaldan la necesidad urgente de implementar prácticas de control de antibióticos en contextos de alta vulnerabilidad.
Introducción: El uso intensivo de macrólidos, como la azitromicina, durante la pandemia de COVID-19 ha favorecido el desarrollo de resistencia antimicrobiana en bacterias Grampositivas a través de múltiples mecanismos de resistencia, como la modificación del ARN ribosomal, bombas de expulsión e inactivación enzimática. Objetivo: Describir la prevalencia de genes de resistencia en bacterias aisladas de pacientes con COVID-19 en Santander, Colombia. Materiales y Métodos: Se realizó un estudio descriptivo de 112 muestras almacenadas de hisopados nasofaríngeos, orofaríngeos y aspirados traqueales de pacientes hospitalizados con COVID-19 en 2020, de las cuales se aislaron 48 cepas Grampositivas. La resistencia a macrólidos y la presencia de los genes ermA, ermB, ermT y mef(A/E) se evaluaron mediante pruebas fenotípicas y moleculares. Resultados: Staphylococcus aureus fue la especie más prevalente con un 58,33% (28), seguida de Staphylococcus epidermidis con un 31,25% (15). Un 47,92% (23) de las cepas mostró resistencia fenotípica a la azitromicina, y un 81,25% (39) resistencia genotípica, con predominancia de ermB con el 58,33% (28) y ermT con el 45,83% (22), sin detección de mef(A/E). Discusión: Estos hallazgos muestran una alta prevalencia de resistencia a macrólidos, lo cual puede estar relacionado con el uso extensivo de estos antibióticos durante la pandemia. Conclusiones: El aumento en la resistencia a macrólidos en bacterias Grampositivas representa un reto crítico para la salud pública, especialmente en el contexto de pandemias. Estos resultados subrayan la necesidad urgente de implementar medidas de control en el uso de antibióticos.
Como citar este artículo: Santos-Angarita Michael J, Arias Guerrero Monica Y, Parada-Diaz Andrea J; Bravo Granados Natalia A, Alfonso Vargas Nadia C, Trejos-Suárez Juanita. Resistencia a macrólidos en Staphylococcus de pacientes con COVID-19 en Santander. Revista Cuidarte. 2025;16(3):e4924. https://doi.org/10.15649/cuidarte.4924
Referencias
Li J, Liu L, Zhang H, Guo J, Wei X, Xue M, et al. Severe problem of macrolides resistance to common pathogens in China. Front Cell Infect Microbiol. 2023;13:1181633. https://doi.org/10.3389/fcimb.2023.1181633
Vázquez-Laslop N, Mankin AS. How macrolide antibiotics work. Trends Biochem Sci. 2018;43(9):668–84. https://doi.org/10.1016/j.tibs.2018.06.011
Sulayyim HJA, Ismail R, Hamid AA, Ghafar NA. Antibiotic resistance during COVID-19: A systematic review. Int J Environ Res Public Health. 2022;19(19):11931. https://doi.org/10.3390/ijerph191911931
Valladales-Restrepo LF, Constain-Mosquera CA, Hoyos-Guapacha MA, Hoyos-Guapacha KL, Gaviria-Mendoza A, Machado-Duque ME, et al. Indicación y prescripción de macrólidos en una población colombiana. Biomédica. 2022;42(2):302–14. https://doi.org/10.7705/biomedica.6116
Quiñones-Laveriano DM, Soto A, Quilca-Barrera L. Frequency of coinfection by respiratory pathogens and its impact on the prognosis of patients with COVID-19. Rev Fac Med Hum. 2021;21(3):617–29. https://doi.org/10.25176/RFMH.v21i3.3520
Lucien MAB, Canarie MF, Kilgore PE, Jean-Denis G, Fénélon N, Pierre M, et al. Antibiotics and antimicrobial resistance in the COVID-19 era: Perspective from resource-limited settings. Int J Infect Dis. 2021;104:250–4. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2020.12.087
Zavala-Flores E, Salcedo-Matienzo J. Medicación prehospitalaria en pacientes hospitalizados por COVID-19 en un hospital público de Lima-Perú. Acta Med Peru. 2020;37(3):393–5. https://doi.org/10.35663/amp.2020.373.1277
Miklasińska-Majdanik M. Mechanisms of resistance to macrolide antibiotics among Staphylococcus aureus. Antibiotics (Basel). 2021;10(11):1406. https://doi.org/10.3390/antibiotics10111406
Mlynarczyk-Bonikowska B, Kowalewski C, Krolak-Ulinska A, Marusza W. Molecular mechanisms of drug resistance in Staphylococcus aureus. Int J Mol Sci. 2022;23(15):8088. https://doi.org/10.3390/ijms23158088
Sarjana Safain K, Bhuyan G, Hassan Hasib S, Islam M, Mahmud-Un-Nabi M, Sultana R, et al. Genotypic and phenotypic profiles of antibiotic-resistant bacteria isolated from hospitalised patients in Bangladesh. Trop Med Int Health. 2021;26(7):720–9. https://doi.org/10.1111/tmi.13584
Pulido-Colina A, Soto Pastrana J, Valencia-Bazalar E, Zavaleta Apestegui M. Caracterización molecular de genes de virulencia (lmb, bca y rib) y de resistencia a macrólidos (ermB, ermTR y mefA) en aislamientos clínicos de Streptococcus agalactiae. Rev Peru Med Exp Salud Publica. 2022;38(4):615–20. https://doi.org/10.17843/rpmesp.2021.384.8726
Quezada-Aguiluz M, Aguayo-Reyes A, Carrasco C, Mejías D, Saavedra P, Mella-Montecinos S, et al. Phenotypic and genotypic characterization of macrolide, lincosamide and Streptogramin B resistance among clinical methicillin-resistant Staphylococcus aureus isolates in Chile. Antibiotics (Basel). 2022;11(8):1000. https://doi.org/10.3390/antibiotics11081000
Buehrle D, Decker B, Wagener M, Adalja A, Singh N, McEllistrem M, et al. Antibiotic consumption and stewardship at a hospital outside of an early Coronavirus Disease 2019 epicenter. Antimicrob Agents Chemother. 2020;64(11):e01011-20. https://doi.org/10.1128/AAC.01011-20
Hirotaki S, Sasaki T, Kuwahara-Arai K, Hiramatsu K. Rapid and accurate identification of human-associated staphylococci by use of multiplex PCR. J Clin Microbiol. 2011;49(10):3627. https://doi.org/10.1128/JCM.00488-11
Clinical and Laboratory Standards Institute. M100 Ed34 Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. 34th ed. 2024. https://clsi.org/standards/products/microbiology/documents/m100/
Pérez-Trallero E, Montes Milagrosa O, Tamayo E, García-Arenzana J, Marimón J. Phenotypic and genotypic characterization of Streptococcus pyogenes isolates displaying the MLSB phenotype of macrolide resistance in Spain, 1999–2005. Antimicrob Agents Chemother. 2007;51(4):1228–33. https://doi.org/10.1128/AAC.01054-06
Coba Cárdenas JE. Caracterización molecular de Enterococcus faecium multirresistentes causantes de infecciones en sangre en un hospital universitario del norte de España [tesis de máster]. España: Universidad de Cantabria; 2017. http://hdl.handle.net/10902/12438
Euler CW, Ryan PA, Martin JM, Fischetti VA. M. SpyI, a DNA methyltransferase encoded on a mefA chimeric element, modifies the genome of Streptococcus pyogenes. J Bacteriol. 2006;189(3):1044. https://doi.org/10.1128/JB.01411-06
Altschul S, Gish W, Miller W, Myers E, Lipman D. Basic local alignment search tool. J Mol Biol. 1990;215(3):403–10. https://doi.org/10.1016/S0022-2836(05)80360-2
Alcock BP, Huynh W, Chalil R, Smith KW, Raphenya AR, Wlodarski MA, et al. CARD 2023: expanded curation, support for machine learning, and resistome prediction at the Comprehensive Antibiotic Resistance Database. Nucleic Acids Res. 2023;51(D1):D690–9. https://doi.org/10.1093/nar/gkac920
Bortolaia V, Kaas R, Ruppe E, Roberts M, Schwarz S, Cattoir V, et al. ResFinder 4.0 for predictions of phenotypes from genotypes. J Antimicrob Chemother. 2020;75(12):3491–500. https://doi.org/10.1093/jac/dkaa345
Clausen PTLC, Aarestrup FM, Lund O. Rapid and precise alignment of raw reads against redundant databases with KMA. BMC Bioinformatics. 2018;19(1):307. https://doi.org/10.1186/s12859-018-2336-6
Gupta SK, Padmanabhan BR, Diene SM, Lopez-Rojas R, Kempf M, Landraud L, et al. ARG-ANNOT, a new bioinformatic tool to discover antibiotic resistance genes in bacterial genomes. Antimicrob Agents Chemother. 2014;58(1):212. https://doi.org/10.1128/AAC.01310-13
Trejos-Suárez J, Santos Angarita M, Arias Guerrero M, Parada Díaz A, Bravo Granados N, Alfonso Vargas N. Macrolide resistance genes in Gram-positive bacteria from COVID-19 patients: metadata and database. 2024. Figshare V3. https://doi.org/10.6084/m9.figshare.27542595.v3
Petinaki E, Papagiannitsis C. Resistance of staphylococci to macrolides-lincosamides-streptogramins B (MLSB): epidemiology and mechanisms of resistance. In: Staphylococcus aureus. IntechOpen; 2018. https://doi.org/10.5772/intechopen.75192
Stahl JP. Lincosamidas. EMC-Tratado de Medicina. 2017;21(4):1–4. https://doi.org/10.1016/S1636-5410(17)86925-7
Besharati R, Ajoudanifar H, Ghasemzadeh-Moghaddam H, Azimian A. Increasing antimicrobial resistance of Gram-positive cocci in the nostrils of health care workers in the post–COVID-19 era compared to pre–COVID-19 era in North Khorasan, Iran. Jundishapur J Microbiol. 2023;16(4):e135551. https://doi.org/10.5812/jjm-135551
Amodio E, Pizzo S, Vella G, De Francisci V, Distefano SA, Giambelluca E, et al. Increase of multidrug-resistant bacteria after the COVID-19 pandemic in a major teaching hospital in Sicily (2018–2021). Int J Antimicrob Agents. 2024;63(5):107123. https://doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2024.107123
Bamigbola F, Raheem T, Fowora M, Adesina F. Detections of mefA, ermB, and mphA macrolide-resistant genes in bacteria isolated from COVID-19 patients from selected health facilities in Ibadan, Nigeria. Adv Microbiol. 2023;13(2):106–17. https://doi.org/10.4236/aim.2023.132007
Hamdy A, Marciniak T, Alseqely M, Ziebuhr W, Abouelmagd E, Abouelfetouh A. Phenotypic and genotypic characterization of commensal staphylococci isolated from young volunteers in Alexandria, Egypt. Sci Rep. 2024;14(1):14850. https://doi.org/10.1038/s41598-024-60924-8
Charnogusrky C, Gil A, Ecker L, Cornejo R, Rios S, Ochoa MR, et al. Prevalence of nasopharyngeal carriage of macrolide and lincosamide resistance genes among a household-based cohort of children and adults in a peri-urban community in Peru. Open Forum Infect Dis. 2023;10(2):ofad500.2077. https://doi.org/10.1093/ofid/ofad500.2077
Widerström M. Commentary: Significance of Staphylococcus epidermidis in health care-associated infections, from contaminant to clinically relevant pathogen: This is a wake-up call! J Clin Microbiol. 2016;54(7):1679–81. https://doi.org/10.1128/JCM.00743-16
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